Dirigido a la obtención del CERTIFICADO DE PROFESIONALIDAD a través de las Competencias Profesionales Adquiridas R.D. 1224/2009 y R.D. 143/2021 del Ministerio de Educación y Formación Profesional
Rafael Cerro
CASTELLÓN
Opinión sobre AGAN0212 Realización de Procedimientos Experimentales con Animales para Investigación y Otros Fines Científicos (Certificado de Profesionalidad Completo)
El método online es maravilloso, ya que puedes realizar el curso cuando quieras desde donde quieras. En cuanto a los temas del curso muy completos y bien explicados
Roger álvarez
BARCELONA
Opinión sobre AGAN0212 Realización de Procedimientos Experimentales con Animales para Investigación y Otros Fines Científicos (Certificado de Profesionalidad Completo)
El curso es perfecto y me ha encantado. La atención por parte de Euroinnova ha sido muy buena, ya que los contacté antes de empezar el curso porque tenía algunas dudas y me las resolvieron todas perfectamente
Juan David Montilla
GRANADA
Opinión sobre AGAN0212 Realización de Procedimientos Experimentales con Animales para Investigación y Otros Fines Científicos (Certificado de Profesionalidad Completo)
El curso perfecto y la modalidad online pensaba que no me gustaría mucho, pero me ha resultado muy fácil realizar el curso gracias a esto. He echado en falta algo de contenido audiovisual, pero los contenidos generales del curso muy buenos
Antonio Perez
CEUTA
Opinión sobre AGAN0212 Realización de Procedimientos Experimentales con Animales para Investigación y Otros Fines Científicos (Certificado de Profesionalidad Completo)
Me ha parecido muy interesante, no tenía ningún conocimiento concreto sobre este tema, pero me gusta mucho este mundo de la experimentación en animales. El curso perfecto para obtener muchos conocimientos sin necesidad de tener formación previa
Nadia Jiménez
BALEARES
Opinión sobre AGAN0212 Realización de Procedimientos Experimentales con Animales para Investigación y Otros Fines Científicos (Certificado de Profesionalidad Completo)
Considero que el curso me dio una mueva perspectiva de cómo abordar estos problemas desde un enfoque mucho más humano y profundo.
CURSO AGAN0212. Realiza este curso online y estudia a distancia compaginando tu vida laboral y personal. Aprende todo sobre realización de procedimientos experimentales con animales para investigación y otros fines científicos. Dale a tu carrera el impulso que merece y no dejes pasar esta oportunidad de dedicarte a lo que siempre has soñado. ¡Te esperamos!
- Referencias históricas, momentos y personajes claves en la utilización de animales como modelos experimentales
- Logros conseguidos en las ciencias biomédicas
- Búsqueda de otras alternativas. Razones científicas y éticas
- Reducción
- Refinamiento
- Reemplazo
- Modelos computerizados de predicción «in silico»
- Uso de organismos inferiores.
- Uso de huevos
- Métodos «in Vitro»
- Otros
- Transformación, limitación y percepción social
- Actitud del investigador frente al animal como sujeto
- Reconocimiento del animal como reactivo biológico
- Obtención de animales biológicamente estandarizados
- Control social de la investigación
- Legislación Nacional y Europea
- Aspectos básicos de legislación
- Objetivo de la legislación
- Seguimiento de Protocolos Normalizados de Procedimientos
- Niveles de bioseguridad
- Técnicas y prácticas de laboratorio
- Equipos de seguridad biológica.
- Detección del dolor, signos de sufrimiento y angustia de animales de experimentación, siguiendo Protocolos Normalizados de revisión
- Conocimiento del aspecto normal de las distintas especies animales
- Pautas de observación del animal: Aspecto exterior, sonidos, movimientos, comportamiento y relación social
- Observación de la jaula o habitáculo, del lecho, cantidad de comida y agua ingerida, etc.
- Determinación cualitativa de la alteración de parámetros fisiológicos: pérdida o aumento de peso, ritmo de la respiración, temperatura, etc.
- Soluciones a administrar, principales solventes.
- Características de las soluciones, concentración, osmolaridad y pH.
- Enteral
- Parenteral
- Tópica
- Inhalatoria
- Velocidad de absorción de sustancias
- Tolerancia
- Facilidad de su administración según recursos materiales y humanos
- Jeringas, conexiones, catéteres y sondas
- Agujas: tipos y escala de medición
- Bombas de infusión mecánicas y electrónicas
- Bombas de infusión osmótica o volumétricas
- Pomadas y geles
- Vaporizadores y nebulizadores
- Sustancia a administrar.
- Volumen
- Especie animal
- Vía de inoculación
- Especie animal
- Vía de administración
- Manejo e inmovilización minimizando estrés
- Material de inmovilización
- Sistemas de infusión continua: anclados y ambulatorios
- Volumen máximo de extracción, según vía y especie animal
- Técnica de recogida de sangre
- Exanguinación
- Decapitación
- Del corazón
- De venas
- De arterias
- Métodos no recomendados de venopunción
- Obtención repetida de sangre: Cateterización
- Heces y orina: jaulas metabólicas o sondas
- Líquido cefalorraquídeo
- Bilis
- Linfa.
- Líquido ascítico
- Definición y aspectos relacionados
- Métodos de eutanasia adecuados según la especie y la experimentación
- Identificación de equipos, instrumental y Materiales necesarios
- Técnicas de necropsia siguiendo procedimientos establecidos
- Preparación del instrumental y material necesarios
- Recogida de muestras
- Registro de datos
- Protección frente a agentes químicos, biológicos y radiológicos
- Tratamiento y eliminación de residuos
- Segregación (recogida selectiva).
- Transporte y almacenamiento en la instalación
- Tratamiento previo a la eliminación
- Eliminación del residuo en la instalación productora o gestor autorizado
- Exploración clínica: observación palpación y auscultación
- Uso de equipos: Métodos invasivos y no invasivos
- Uso de programas informáticos específicos para el procedimiento experimental.
- Análisis estadístico en función del tipo de parámetro
- Establecimiento previo al procedimiento del sistema de recogida de datos
- Características de un registro de datos: escrito o automatizado, duradero (copias de seguridad), completo, accesible, hojas específicas o bases de datos debidamente confeccionadas según datos, normalizados, establecer responsable de la conservación del archivo, etc.
- De adquisición de la información
- Diagnósticos
- De evaluación
- De monitorización y control
- Animal: diferentes generadores de señales
- Estímulos: Visuales, acústicos, táctiles, eléctricos, etc.
- Transductor: sensibilidad, linealidad, respuesta en frecuencias (lineal, integrador y diferenciador) y rendimiento
- Equipo de tratamiento o procesado de una señal
- Equipo de presentación, lectura o registro: registros mecánicos o electrónicos
- Equipo de control automático de los estímulos, de los transductores, etc.
- Inaccesibilidad de las variables
- Variabilidad de los datos
- Interrelaciones entre variables
- Interacción entre órganos y sistemas
- Efecto del transductor sobre la medición a realizar
- Artefactos en las medidas
- Limitaciones de la energía
- Temperatura
- Fuerza, desplazamiento, velocidad y aceleración
- Presión sanguínea
- Volumen y presión respiratoria
- Flujo en gases
- Flujo en líquidos
- Objetivo
- Ventajas
- Componentes de un sistema de biotelemetría
- Diagnóstico por imagen.
- Telemetría
- Estudios de comportamiento
- Pletismografía
- Otros métodos no invasivos
- Hipnosis o sueño
- Analgesia o ausencia de dolor
- Relajación muscular
- Bloqueo de la actividad refleja
- Anestésico ideal
- La especie animal
- Estado del animal y objetivo de la investigación
- Tipo de procedimiento
- Duración del procedimiento
- Experiencia del técnico y equipo disponible
- Ayuno
- Preanestesia. Tranquilizantes y anticolinérgicos.
- Anestesia. Inducción y mantenimiento anestésicos
- Postanestesia
- Fármacos y dosis de los mismos
- Vías y modo de administración
- Equipamiento
- Tipos de anestésicos inhalatorios
- Eliminación de gases anestésicos.
- Intubación endotraqueal e instauración de ventilación artifical
- Implantación de una vía venosa permanente
- Pautas para una recuperación normal
- Reversión de la anestesia, utilización de antagonistas
- El plano anestésico. Respuesta refleja.
- La oxigenación, circulación y ventilación durante la anestesia.
- La temperatura.
- Extrapolación de una especie a otra
- Adecuación de la profundidad anestésica a las necesidades de la cirugía
- Utilidad de anestesia inhalatoria
- Escalas de severidad (gravedad o intensidad de dolor)
- Signos clínicamente valorables: cambios en la actividad, aspecto, temperatura, ingesta, variables fisiológicas y vocalizaciones.
- Principales fármacos analgésicos
- Analgesia polimodal o multimodal
- Analgesia preventiva
- Analgesia local y regional
- Elección y disponibilidad de los animales
- Valoración preoperatoria del estado sanitario del animal
- Preparación del animal
- Comprobación de la disponibilidad de instalaciones quirúrgicas y pre- y post-operatorias
- Elección y preparación del instrumental quirúrgico, aparatos y accesorios
- Preparación del cirujano
- Agujas quirúrgicas.
- Material de sutura. Sutura absorbible y no absorbible.
- Otros accesorios quirúrgicos.
- Datos anatómicos, fisiológicos y biológicos de los animales más utilizados en investigación
- Corte de la piel y otros tejidos
- Control del sangrado y de la desecación de tejidos y órganos
- Técnicas y nudos de sutura
- Laparotomía
- Accesos a grandes vasos: vena yugular y arteria carótida
- Ovariohisterectomía
- Cesárea
- Castración: ovariectomía y orquiectomía
- Extracción de tejidos sólidos y realización de una biopsia.
- Perfusión de tejidos y órganos.
- Cuidados de la herida
- Complicaciones quirúrgicas postoperatorias
- Supervisión diaria de la herida, desinfección y empleo de antibióticos.
- Utilización de analgesia postoperatoria
- Aplicación diaria de escalas de severidad
- Determinación del punto final y eutanasia
- Esquema del aparato reproductor masculino en mamíferos
- Órganos, conductos y vías, vesículas y glándulas
- Desarrollo y funcionamiento del aparato reproductor
- Espermatogénesis, almacenamiento y maduración de los espermatozoides
- Esquema del aparato reproductor femenino en mamíferos
- Órganos y conductos
- Características anatómicas en las distintas especies de animales de experimentación
- Desarrollo y funcionamiento del aparato reproductor
- Oogénesis y ovulación
- Diferencias en la ovulación según la especie: espontánea o inducida
- Vida fértil y edad óptima de cruce
- Periodo de gestación
- Celo postparto
- Pseudogestación
- Efecto Witten (sincronización del celo)
- Efecto Bruce
- Ciclo estral. Fases del ciclo
- Hembras poliestricas (anuales y estacionales), biestricas y monoestricas
- Cambios fisiológicos y comportamiento de las hembras durante el celo
- Influencia en la conducta sexual de los factores: Sociales, ambientales y fisiológicos
- Duración del celo y aspectos relacionados con la cubrición según especie animal
- Comprobación de la cópula: frotis vaginal o visualización del tapón vaginal
- Dónde y cómo se produce la fecundación. Formación del zigoto
- Fases de la gestación: huevo, embrión y feto
- Definición de poblaciones naturales y artificiales
- Elementos de genética de poblaciones. Selección de los progenitores
- Frecuencias génicas y genotípicas. Ley de Hardy-Weinberg
- Sistemas de cruce: monogámico, poligámico y harén
- Ventajas e inconvenientes de los distintos sistemas de cruce
- Obtención de animales consanguíneos o Inbred: Programa de líneas paralelas o programa de línea simple
- Obtención de animales no consanguíneos u Outbred: Sistema Robertson y Sistema Rotativo o de Poiley
- Sistema al azar
- Programas de cría de registro y control informatizados de las colonias de animales
- Tamaño de la camada
- Sexado
- Edad y peso al destete
- Realización de los lotes
- Etiquetado
- Elección de los progenitores, gestión informatizada, genotipado y crioconservación
- Legislación y normativa actualizada sobre la utilización de OMG
- Precauciones y medidas de contención de animales modificados genéticamente según la especie
- Calidad del animal de experimentación: Interacción genotipo-ambiente
- Causas que justifican el control de la pureza genética: Mutaciones espontáneas e interacción accidental con otra cepa
- Prevención del control de la pureza genética: congelación de embriones y aislamiento físico
- Selección genética de los animales.
- Consanguinidad: concepto, aplicaciones, consecuencias en los animales.
- Deriva y variabilidad genética: Definición y consecuencias en la colonia.
- Manifestación de un Knock-out en homocigosis
- Mantenimiento de líneas transgénicas en heterocigosis y genotipado para detección de homocigóticos
- Características de las líneas consanguíneas
- Líneas genéticamente estandarizadas: Líneas consanguíneas, Híbridos F1, coisogénicas, congénitas, consanguíneas recombinantes (RIS), congénitas recombinantes (RCS), consómicas y conplásticas. Líneas no consanguíneas
- Influencia de la genética sobre los resultados experimentales
- Aplicaciones específicas en investigación de las distintas categorías genéticas
- Nomenclatura de las líneas consanguíneas.
- Nomenclatura de las líneas coisogéncas y congénitas
- Nomenclatura de las líneas consanguíneas recombinantes
- Nomenclatura de las líneas cogénicas recombinantes
- Nomenclatura de los ratones knock-out
- Nomenclatura de los roedores no consanguíneos
- Técnicas de obtención de animales transgénicos: Método de microinyección y Método del retrovirus
- Técnicas para generar mutaciones heredables en ratón
- Creación de ratones Knock-out
- Detección de la alteración genética mediante reacción en cadena de polimerasa (PCR)
- Equipos para PCR: termocicladorres
- Identificación del individuo
- Bases de datos fenotípicas internacionales
- Métodos de control de la pureza genética de los animales de experimentación:
- Marcadores bioquímicos
- Marcadores Inmunológicos
- Análisis del color del pelaje
- Injertos de piel
- Caracteres reproductivos
- Marcadores de ADN. Fingerprinting de ADN. Análisis de microsatélites por PCR. Otras técnicas moleculares
- Registro de información individualizada de: Construcción, línea, generación, genotipo, sexo, color, edad, identificación, caracterización fenotípica, progenitores (genealogías), investigación de destino y responsable
- Lavado del epidídimo y los vasos deferentes y esperma eyaculado (lavaje de los cuernos uterinos)
- Lavado de oviducto y útero
- Conservación de espermatozoides, ovocitos y embriones
- Ventajas e inconvenientes de la inseminación artificial y la fertilización in vitro
- Inseminación por vía vaginal
- Inseminación por vía uterina
- Transferencia del esperma dentro del oviducto por procedimiento quirúrgico
- Elección de las hembras con elevado índice de fertilidad
- Protocolo de superovulación
- Sincronización del celo - Inseminación al comienzo del estro
- Cruce de hembras con machos vasectomizados - pseudogestación
- Medios de cultivo de los gametos, incubación y fecundación
- Factores que influyen en la probabilidad de fecundación
- Selección y sistemas de control de embriones
- Transferencia de embriones: Implantación quirúrgica de los óvulos fecundados
- Objetivo: Mejorar la calidad sanitaria de los animales
- Protocolo de rederivación: Superovulación, fertilización natural y transplante de los embriones a una hembra pseudopreñada
- Principios físicos: temperatura y cambios de estado
- Principios químicos: composición de los crioprotectores
- Principios biológicos: diferencias entre células, tejidos o especies
- Equipos de congelación: baños de alcohol, tanques de nitrógeno, congeladores programables, pajuelas, etc.
- Dos enfoques para la criopreservación: la congelación controlada (lenta y rápida) y la vitrificación (congelación ultra-rápida)
- Medios (crioprotectores): elección y concentración del medio en función de la técnica
- Prevención de la contaminación genética
- Limitación de la deriva genética por la variación en la frecuencia de los genes
- Mantenimiento de líneas transgénicas y mutantes a largo plazo
- Reducción de costes
- Control de las patologías asociadas al mantenimiento animales vivos
- Tiempo
- Coste
- Recursos materiales
- Congelación de esperma: crioprotectores, temperaturas y tiempos específicos
- Estrategias de congelación de oocitos: en estado inmaduro (en forma de vesícula germinal) y en estado maduro (después de la ovulación) bajo la forma de oocitos en metafase II, con mayor eficacia.
- Embriones: estadío-eficacia del sistema
- Sistemas de identificación, registro y mantenimiento de gametos y embriones criopreservados, bancos de embriones y gametos congelados
- Medidas preventivas y de protección durante el manejo de productos para la criopreservación.
- Control de calidad.
- Concepto de morfología y fisiología
- Niveles de organización. Relación entre estructura y función
- Clasificación de los tejidos
- Concepto de proliferación y diferenciación celular (especialización)
- Factores reguladores: Señales endógenas y exógenas
- Contacto directo célula-célula. Moléculas de adhesión
- Célula procariota: estructura y funciones básicas
- Célula eucariota: Organización, estructura y función de los diferentes orgánulos celulares, organización función del núcleo.
- Descripción de algunos tipos de células que se suelen utilizar en cultivos celulares: tumorales, epiteliales, Tejido conjuntivo, Tejido muscular, Tejido nervioso, Sangre, tejidos linfoides y Células madre.
- Ventajas de los ensayos in vitro: Ética y legislación, Control del medio extracelular, Homogeneidad de la muestra, Disminución del gasto y tiempo, objetivables y cuantificables, precisión, reproducibilidad, etc.
- Limitaciones: Excesiva sensibilidad, Límite de producción, Inestabilidad, Validación del modelo, etc.
- Sistemas para la obtención de células: Banco de células o aislamiento a partir de un tejido
- Métodos de aislamiento del tejido, disección/disgregación
- Requisitos especiales para el cultivo de células primarias
- Ventajas e inconvenientes de la utilización de células primarias.
- Conservación o mantenimiento células primarias. Requisitos especiales para el cultivo de células primarias.
- Tipos de líneas celulares establecidas. Células en monocapa y células en suspensión. Células inmortalizadas y transformadas
- Preparación de las líneas.
- Control de los cultivos celulares (pH, sobrecrecimiento, estado del medio, contaminación, etc.)
- Recuento de células. Preparación de células en suspensión y de células adherentes. Uso del hemocitómetro.
- Subcultivos de células. Curva de crecimiento.
- Métodos para aumentar la producción.
- Ventajas y desventajas de la líneas celulares estables
- Qué es un banco de células
- Bancos internacionales más importantes: American Type Culture Collection (ATCC) y European Collection of Cell Cultures (ECACC), etc.
- Otros bancos de células: Banco Nacional de Líneas Celulares, etc.
- Órganos y tejidos más comunes: hígado, corazón, riñón, páncreas, branquias, encéfalo, piel, sangre, etc
- Ingeniería de tejidos
- Cultivo y baños de órganos
- Órganos perfundidos
- Explantes de órganos
- Órganos reconstituidos
- Ventajas e inconvenientes de los diversos tipos de modelos in vitro
- Disección de órganos y tejidos para su extracción.
- Baños de tejidos y órganos. Equipamiento y medios de conservación.
- Obtención de explantes. Tamaño de la muestra, Perfusión de la muestra y equipamiento
- Cabinas de flujo laminar: tipos (vertical y horizontal) y nivel de protección (clase I, II y III)
- Incubadores: mantenimiento del nivel de CO2, temperatura y humedad
- Microscopios: Estándar e invertidos con ópticas de contraste de fases
- Frigoríficos, congeladores (de -20º y -80º C) y equipo de criogenia (unidad de almacenamiento en nitrógeno líquido (-196º C) de líneas celulares)
- Equipos de esterilización y filtración: autoclaves, esterilización por gas, por calor seco, sistema de filtración, purificación de agua, etc.
- Otros instrumentos: Balanzas, Baño termostático, centrífugas refrigeradas y no refrigeradas, Equipos de purificación de agua, Micropipetas de volumen variable o de volumen fijo, pHmetro, Pipeteadores automáticos
- Recipientes para cultivos: Placas de Petri, Multiplacas, Frascos de Roux de diferentes formas y tamaños o Especiales, como las «roller bottles» o con portaobjetos
- Inicio del trabajo en cabina: encendido y puesta a punto de la cabina, desinfección y recomendaciones para el trabajador.
- Durante la manipulación: distribución del material y utilización de la zona de trabajo, control del flujo y turbulencias de aire, actuación ante un vertido de material contaminado y alarmas.
- Al finalizar el trabajo: Limpieza, vaciado de material, apagado y cerrado de la cabina
- Mantenimiento: semanal (limpieza y desinfección de superficie y paredes, mensualmente (revisión de válvulas interiores) y anualmente se certificará por una entidad cualificada.
- Mesa de trabajo o poyata de laboratorio: orden, limpieza y desinfección
- Apertura del material estéril dentro de la cabina
- Marcaje de las placas en la tapa y en un lateral de la base, de manera distinta para cada placa, para evitar intercambiar tapas.
- Toma del medio con la pipeta y transferencia a la placa entreabierta (no retirar la tapa)
- Tratamiento como residuo según riesgo biológico del cultivo
- Área de preparación de medios: equipamiento
- Área de limpieza y esterilización: dimensiones mínimas, organización y equipamiento (máquinas de lavado de material y esterilizadores)
- Área de transferencia: cabina de flujo laminar/seguridad biológica y otros equipos
- Área de incubación o cámaras de crecimiento: control de iluminación, temperatura y humedad. Alarmas
- Vidrio: pipetas, probetas, vasos, matraces y botellas de vidrio para preparación, almacenamiento y clasificación de medios y reactivos
- Plástico: Cultivos en placas y botellas, tubos de ensayo para diferentes técnicas y preparación de alícuotas de los reactivos
- Lavado, preparación y esterilización del material: área específica del laboratorio, con el método y desinfectantes adecuados
- Métodos de esterilización: Calor directo, flameado; Calor seco, Horno Pasteur y Calor Húmedo, Autoclave
- Principales contaminantes: microorganismos, otras líneas celulares del laboratorio y contaminación química
- Fuentes de la contaminación accidental: origen del cultivo tejido o células, proceso de manipulación del cultivo, empleo de reactivos biológicos contaminados, material contaminado y ambiente de trabajo
- Prevención para evitar contaminaciones: obtener siempre los cultivos de centros reconocidos que certifiquen el origen; trabajar bajo unas correctas normas de trabajo, limpieza y esterilidad, utilización de Inhibidores del crecimiento de los contaminantes (antibióticos y antifúngicos), etc.
- Tipos de sustratos
- Factores de adhesión celular
- Interacciones células-substrato: Medios semisólidos: matrices.
- Métodos de disgregación celular: mecánicos, químicos y enzimáticos
- Características de los medios de cultivo celular: composición, osmoralidad, viscosidad, tensión superficial, especificidad, pH, capacidad tamponadora, esterilidad, etc.
- Componentes y suplementos: Agua, sales, glucosa, aminoácidos y vitaminas. Suero, factores de crecimiento y otros suplementos específicos. Indicador de pH. Pautas par el suplemento con antibioticos
- Tipos de medios. Medios libres de suero.
- Opciones para la elección, en polvo, líquido concentrado o listo para usar
- Preparación de medios líquidos, a partir de polvo (filtración) o esterilizados en autoclave
- Opciones para la elección, en polvo, líquido concentrado o listo para usar
- Preparación de medios líquidos, a partir de polvo (filtración), concentrados o esterilizables en autoclave
- Hormonas y factores de crecimiento
- Suero. tipos; suero de ternera (CF), suero bovino fetal (FCS) el suero de caballo (HS) y suero humano (HuS). Sustitutivos del suero
- Factores que afectan a la supervivencia de las células en un cultivo
- Proceso de almacenamiento por congelación con agentes crioconservantes (glicerol, DMSO,...).
- Disminución progresiva de temperaturas hasta utilizar depósitos con nitrógeno líquido. Sistemas automáticos para la reducción progresiva y controlada de la temperatura.
- Factores que se favorecen con la criopreservación
- Identificación: Datos mínimos de indentificación de cada vial
- Procedimiento de descongelación
- Aplicaciones: estudio de las propias células, clonación, el cáncer, biología del desarrollo, investigación en biología celular y bioquímica, en farmacología y toxicología, obtención de anticuerpos u hormonas, técnicas diagnósticas, etc.
- Ventajas de la utilización de cultivos celulares en el campo de la toxicidad
- Limitaciones de los ensayos in Vitro para estudios de toxicidad
- Ensayos utilizados en pruebas de citotoxicidad: Pruebas citológicas: observación al microscopio, Pruebas bioquímicas. Pruebas de viabilidad (de respuesta inmediata o de corto plazo y de respuesta a largo plazo o de supervivencia)
- Células asesinas
- Requisitos de las pruebas de citotoxicidad
- Preparación de las células efectoras y diana
- Prueba de citotoxicidad
- Resultados e interpretación
- Estudios del efecto de diferentes sustancias en cultivos con tejidos y órganos diana. Aplicaciones
- Estudios del efecto de diferentes sustancias en cultivos de células (primarias o líneas establecidas). Aplicaciones
- Rojo neutro
- Prueba MTT
- Liberación al medio de la láctico deshidrogenasa (LDH)
- Ensayos de fluorescencia
- Toxicidad relativa: (concentración efectiva en el 50 % de las células)
- Recolección de las células de los cultivos: centrifugación continua o filtración y extracción en régimen continuo
- Sistemas cromatográficos para el aislamiento y purificación de las toxinas. Equipos relacionados
- Principales riesgos biológicos
- Evaluación de riesgos: Propiedades intrínsecas del cultivo celular, como resultado de la modificación genética, como resultado de una infección con agentes patógenos. Condiciones de trabajo
- Normas de trabajo en los laboratorios de cultivos celulares
- Esquema general: transductor, amplificador y sistema de registro
- Equipos de espectroscopia de Bioimpedancia eléctrica
- Equipos de medida de la biomasa
- Generales: agitadores, homogeneizadores, centrífugas, balanzas, pipetas, dispensadores, baños termostáticos, incubadoras, autoclaves, estufa, pHmetros, entre otros
- Análisis químicos: cromatógrafos, espectrómetros, HPLC
- Análisis bioquímicos: analizadores automatizados, espectrofotómetros
- Análisis hemáticos: hemocitómetros, lupas, coagulómetros, tromboelastógrafos,
- Análisis microbiológicos: cabinas de cultivos, incubadoras, estufas
- Organización general de un laboratorio y de sus secciones
- Disolventes
- Anticoagulantes
- Tampones
- Fijadores
- Alcoholes
- Tinciones
- Equipos de protección individual y colectivos (EPIs, cabinas, SAS, presión diferencial)
- Protocolos de actuación. Normativa específica relativa a la gestión de residuos biosanitarios.
- Tipos de contenedores.
- Eliminación selectiva de residuos.
- Preparación de disoluciones y diluciones.
- Resolución de problemas.
- Centrifugación de muestras.
- Métodos de obtención.
- Métodos de conservación.
- Métodos de procesado.
- Óptico (macros y microscópico)
- Químicos
- Bioquímico y hematológico
- Según el origen y objetivo
- Fraccionamiento
- Conservación
- Analizadores
- Técnicas cuantitativas
- Técnicas cualitativas
- Disolventes
- Anticoagulantes
- Tampones
- Fijadores, alcoholes
- Tinciones
- Físicos
- Químicos
- Humanos
- Biológicos
- Características generales de la sangre.
- Elementos formes, plasma y suero. Morfología de los elementos celulares de la sangre. Órganos y tejidos hematopoyéticos.
- Factores que condicionan la muestra
- Hematopoyesis. Características del plasma. Proteínas plasmáticas.
- Hemostasia y coagulación.
- Recomendaciones preanalíticas en el manejo de sangre
- Obtención de muestras de sangre para estudio: citológico, de coagulación, parasitológico, bioquímico, inmunológico y microbiológico
- Parámetros analizables a partir de una muestra sanguínea
- Principios de fisiopatología de la sangre
- Características generales de la orina.
- Obtención de una muestra de orina para: estudio rutinario, cuantificación de sustancias o elementos formes y microbiológico
- Fisiopatología de la orina. Análisis de rutina de la orina.
- Estudio del sedimento urinario. Otras determinaciones analíticas en orina.
- Errores que pueden alterar los resultados. Interpretación de resultados.
- Características generales de las heces.
- Obtención de una muestra de heces para: detección de sangre oculta, sustancias o elementos formes, análisis microbiológico y parasicológico
- Análisis de muestras fecales. Fisiopatología de las heces.
- Determinaciones de laboratorio en el estudio de las muestras fecales.
- Errores que pueden alterar los resultados. Interpretación de resultados.
- Métodos de obtención y manejo de muestras de: semen, saliva, mucosas, exudados y otros líquidos orgánicos (líquido cefalorraquídeo, peritoneal, pleural, articular, etc.).
- Frescas, conservadas,…
- Procesado, tinción, conservación
- Punción Aspiración con Aguja Fina (PAAF).
- Biopsia
- Asepsia
- Automatizado o manual (corte, deshidratación, inclusión, fijación)
- Equipos (micrótomos, baños, microscopios…)
- Deshidratación (química, térmica,…)
- Fijación (química, térmica, …)
- Tinción
- Biológicos
- Físicos
- Químicos
- Legislación y normativa actualizada sobre clasificación, envasado y etiquetado de preparados peligrosos
- Legislación y normativa actualizada sobre la declaración de sustancias nuevas y clasificación, envasado y etiquetado de sustancias peligrosas
- Legislación y normativa actualizada sobre el Reglamento de almacenamiento de productos químicos y sus instrucciones técnicas complementarias
- Medidas generales relativas al local
- Precauciones durante el desarrollo del trabajo
- Reglas de higiene personal
- Revisiones médicas del personal
- Extracción de ADN (a partir de sangre, tejidos o células en cultivo, células bucales,…)
- Extracción de ARN (mediante tiocianato de guanidina, urea-cloruro de lítio, purificación de poli(A)-ARN,
- Determinación de ácidos nucleicos
- Separación analítica y preparativa del ADN (electroforesis analítica, geles de agarosa, …)
- Identificación y etiquetado de las muestras
- Contaminación (por RNAsas, DNA,…)
- Degradación enzimática
- Obtención de ADN y ARN a partir de tejidos líquidos (anticoagular)
- Inhibidores RNAsas
- Recepción o toma de muestras. Medidas preventivas
- Precauciones generales relativas al laboratorio
- Precauciones durante el desarrollo del trabajo
- Reglas de higiene personal
- Precauciones durante el desarrollo del trabajo
- Reglas de higiene personal
- Almacenamiento de muestras biológicas. Zonas de acceso restringido. Contenedores específicos. Manejo con EPIs
- Transporte de material biológico. Sistema básico de embalaje. Identificación
- Composición química y estructura de los ácidos nucleicos: Nucleótidos de importancia biológica y Factores que estabilizan la doble hélice
- Funciones de los ácidos nucleicos
- Endonucleasas (Tipo 1 y 2)
- Polimerasas
- Ligasas
- Nucleasas
- Fosfatasas
- Quinasas
- ARNasas
- Modo semiconservativo
- Horqueta de replicación
- Enzimas que intervienen en el proceso
- Molécula accesoria: Iniciador
- Proceso: Cadena molde o antisentido. ARNm o transcripto primario. Enzima que dirige: polimerasa de ARN
- Modificaciones postranscripcionales.
- Agentes genotóxicos y mecanismos de reparación del DNA
- Reparación de dímeros de pirimidinas mediante fotoreactivación
- Remoción de grupos metilo
- Bases mal apareadas
- Metilación del DNA
- Reparación del DNA durante o después de su replicación
- Reparación de cortes en ambas cadenas del DNA
- Sistemas De reparación de DNA: NER (Nucleotide Excision Repair)
- Mecanismos de reparación de DNA: BER (Base escisión Repair)
- Alteraciones que puede sufrir el ADN: Mismatch (mal apareamiento), Desaminación, Pérdida de bases, Unión covalente entre bases de la misma cadena, Unión de grupos alquilo, Ruptura de simple cadena (nick) y Ruptura de doble cadena
- Alteraciones en las proteínas que se sintetizan y enfermedades asociadas. Desnaturalización
- Aminoácidos y neurotransmisores
- Enlaces peptídicos, oligopeptidos y polipeptidos
- Estructura primaria, secundaria , terciaría y cuaternaria
- Funciones de las proteínas: estructural, reguladora, de transporte, de reserva, enzimática, mensajera y de receptores químicos
- Moléculas implicadas en la transcripción y traducción de las proteínas
- Fases de la transcripción de las proteínas
- Fases de la traducción de las proteínas
- Regulación de la transcripción y traducción
- Moléculas implicadas en la síntesis y traducción de las proteínas
- Fases de la síntesis de las proteínas
- Fases de la modificación de las proteínas
- Regulación de la síntesis y modificación de las proteínas
- Serpinopatías
- Proteínas priónicas
- Neuroserpinas
- Hemoglobina
- Repeticiones de glutamato
- Proteína Tau
- Inmunoglobulinas cadenas ligeras
- Proteína CFRT Péptido B-amiloide
- Superóxido dismutasa
- B2 microglobulina
- Tipos de electroforesis: unidimensionales, bidimensionales y técnicas relacionadas.
- Separación electroforética de las proteínas séricas. Patrones de normalidad y de alteración
- Características del material y de los reactivos. Averías o disfunciones
- Características de los equipos. Condiciones de uso y mantenimiento
- Calibración. Averías o disfunciones
- Características del material y de los reactivos
- Inmunocitoquímica
- Western blot
- Inmunoprecipitación
- Co-inmunoprecipitación
- Pull-down
- TUNEL
- Fundamento y aplicaciones.
- Características de los equipos.
- Condiciones de uso y mantenimiento. Calibración. Averías o disfunciones.
- Características del material y de los reactivos.
- Microarrays de ADN: Diseño de un microarrays de ADN. Tipos
- Microarrays de Proteínas: Diseño de un microarrays de proteínas. Tipos
- Microarrays de Carbohidratos: Diseño de microarrays de carbohidratos. Aplicaciones
- Microarrays de Células
- Microarrays de Tejidos
- Perspectivas de mercado de los microarrays y biochips en el área de salud humana
- Genómica funcional
- Relación entre la biología y la informática
- Biochips
- Bioinformática
- Bibliografía
- Material y métodos
- El ADN
- Los enzimas
- Los nucleótidos
- Los cebadores
- Limitaciones y problemas de la PCR (tamaño secuencias limitado, PCR previa, contaminación, inespecifidad de cebadores,…)
- Factores que afectan a la movilidad del ADN en el gel (masa molecular, voltaje, composición de las bases, temperatura, solución amortiguadora,…)
- Tipos de electroforesis: PFGE (Pulsed Field Gel Electroforesis), OFAGE (Orthogonal Field Alternative Gel), FIGF (Field Inversion Gel Electroforesis), CHEF (Contour Clamped Homogeneus Electric Field), Electroforesis preparative.
- Aplicaciones: Análisis comparativos de patrones de restricción cromosómicos, construcción de mapas cromosómicos, topología y tamaño de cromosomas, análisis de elementos extracromosómicos
- Factores que influyen en la hibridación.
- Composición de las bases.
- Concentración de ADN/ARN y tiempos Cot y Rot
- Concentración y tamaño de la sonda
- Concentración ADN diana
- Desnaturalización del ADN diana y fijación a un soporte.
- Marcaje de una sonda monocadena
- Hibridación: mezcla y renaturalización
- Detección de los híbridos
- Medio de reacción
- Polímeros inertes
- Tiempos de hibridación y mecanismos de detección.
- Tipos de hibridación (soporte sólido, en fase líquida, in situ, in situ sobre cromosomas, in situ de bacterias para clonaje).
- Método Southerm
- Métodos de transferencia (por capilaridad, por vacío, electroforético)
- Aplicaciones del Método Southerm
- Mapas de restricción
- Detección de polimorfismos (RFLP, VNTR, STR) y deleciones.
- Secuenciación química, método de Maxam y Gilbert
- Secuenciación enzimática, método de Sanger o de los dideoxinucleótidos.
- Tipos de secuenciaciones enzimáticas (Cíclica, múltiple, automática, quimioluminiscente)
- Utilidad: analizar el genoma completo de un organismo
- Fundamento: hibridación con sondas
- Soporte: placas microtitulación o membranas de blotting
- Fabricación: pueden ser creados en el laboratorio o usando robótica : Macroarray: señales > 300 micras y Microarray: pocillos < 200 micras
- Introducción a la Bioinformática
- Consulta de Bases de datos en biología molecular
- Alineamiento de secuencias
- Predicción de genes
- Introducción a los microarrays de DNA
- Definición de genoma, gen y cromosoma
- Organización, estabilización y localización del genoma
- Estructura del ADN
- Estructura del ARN
- El código genético
- Secuencias codificantes versus no codificantes
- Citogenética. El cariotipo normal en los roedores de laboratorio
- Anomalías del número de cromosomas (Heteroploidías)
- Anomalías de la estructura de los cromosomas
- Genético
- Congénito
- Hereditario
- Modelos provenientes de mutaciones espontáneas o inducidas
- Modelos generados por transgénesis
- Modelos generados in Vitro por manipulación de células ES
- Modelos generados por transgénesis condicional
- Modelos animales del desarrollo embrionario
- Diagnóstico prenatal rápido de aberraciones cromosómicas por PCR
- Diagnóstico citogenético
- Diagnóstico prenatal de enfermedades hereditarias
- VNTR
- STR
- Modelos murinos de enfermedades hereditarias simples (mendelianas): Desórdenes de la visión, de la audición, neurológicos y neuromusculares. Enfermedades de los huesos y cartílagos, de la piel y el pelo, hematológicas, inmunodeficiencias y metabólicas
- Modelos murinos de enfermedades hereditarias complejas (multigénicas): Cáncer, obesidad, diabetes, etc.
Más de 20 años de experiencia en la formación online.
Más de 300.000 alumnos ya se han formado en nuestras aulas virtuales.
Alumnos de los 5 continentes.
25% de alumnado internacional.
4,7 |
2.625 Opiniones |
8.582 |
suscriptores |
4,4 |
12.842 Opiniones |
5.856 |
Seguidores |
Flexibilidad
Aprendizaje 100% online, flexible, desde donde quieras y como quieras
Docentes
Equipo docente especializado. Docentes en activo, digitalmente nativos
Acompañamiento
No estarás solo/a. Acompañamiento por parte del equipo de tutorización durante toda tu experiencia como estudiante.
Aprendizaje real
Aprendizaje para la vida real, contenidos prácticos, adaptados al mercado laboral y entornos de aprendizaje ágiles en campus virtual con tecnología punta
Seminarios
Seminarios en directo. Clases magistrales exclusivas para los estudiantes
Se llevan a cabo auditorías externas anuales que garantizan la máxima calidad AENOR.
Nuestros procesos de enseñanza están certificados por AENOR por la ISO 9001 y 14001.
Contamos con el sello de Confianza Online y colaboramos con las Universidades más prestigiosas, Administraciones Públicas y Empresas Software a nivel Nacional e Internacional.
Disponemos de Bolsa de Empleo propia con diferentes ofertas de trabajo, y facilitamos la realización de prácticas de empresa a nuestro alumnado.
En la actualidad, Euroinnova cuenta con un equipo humano formado por más de 300 profesionales. Nuestro personal se encuentra sólidamente enmarcado en una estructura que facilita la mayor calidad en la atención al alumnado.
Como parte de su infraestructura y como muestra de su constante expansión, Euroinnova incluye dentro de su organización una editorial y una imprenta digital industrial.
Financiación 100% sin intereses
Hemos diseñado un Plan de Becas para facilitar aún más el acceso a nuestra formación junto con una flexibilidad económica. Alcanzar tus objetivos profesionales e impulsar tu carrera profesional será más fácil gracias a los planes de Euroinnova.
Si aún tienes dudas solicita ahora información para beneficiarte de nuestras becas y financiación.
Como premio a la fidelidad y confianza de los alumnos en el método EUROINNOVA, ofrecemos una beca del 25% a todos aquellos que hayan cursado alguna de nuestras acciones formativas en el pasado.
Para los que atraviesan un periodo de inactividad laboral y decidan que es el momento idóneo para invertir en la mejora de sus posibilidades futuras.
Una beca en consonancia con nuestra apuesta por el fomento del emprendimiento y capacitación de los profesionales que se hayan aventurado en su propia iniciativa empresarial.
La beca amigo surge como agradecimiento a todos aquellos alumnos que nos recomiendan a amigos y familiares. Por tanto si vienes con un amigo o familiar podrás contar con una beca de 15%.
* Becas aplicables sólamente tras la recepción de la documentación necesaria en el Departamento de Asesoramiento Académico. Más información en el 900 831 200 o vía email en formacion@euroinnova.es
* Becas no acumulables entre sí
* Becas aplicables a acciones formativas publicadas en euroinnova.es
¿Estás pensando en adentrarte en el campo de las pruebas experimentales con animales para fines científicos? ¿Quieres seguir formándote y desarrollando tu carrera profesional? ¿No puedes desplazarte para realizar la formación? Si esto es así, en Euroinnova te ofrecemos este Curso AGAN0212, para que puedas realizarlo sin problemas y con flexibilidad horaria total, sin tener que desplazarte.
Si tienes alguna duda, ponte en contacto con nosotros por correo o por llamada y te la resolveremos lo antes posible.
Dale a tu carrera el impulso que merece y desarróllate mediante este Curso AGAN0212
La experimentación con animales es un tema que aborda gran cantidad de debates a día de hoy, tanto a nivel social, político y científico. Hace un tiempo que se habla del bienestar animal y esto no va en consonancia con la experimentación animal.
La experimentación animal es la crianza y uso de modelos animales para llevar a cabo investigaciones científicas, que tiene como objetivo principal alargar y mejorar la vida de los humanos y los animales domésticos. Este tipo de investigaciones son obligatorias para poder poner en marcha el uso de nuevos fármacos en seres humanos, esto es debido a las atrocidades que se realizaron en humanos en la Segunda Guerra Mundial. Según la declaración de Helsinki, las investigaciones para fármacos que serán usados en humanos deben estar probados anteriormente en animales.
Existen diversos tipos de experimentos con animales en función del campo al que se apliquen:
Las alternativas de reemplazo son técnicas que buscan sustituir el uso de animales vivos en las investigaciones. Una forma de realizar esto es trabajar con cultivos de células humanas y otros tejidos. Estas alternativas no buscan el reemplazo total de animales, sino que pretenden reducir al máximo el número de animales usados en una investigación, ya que en algunas ocasiones por un mal diseño de la investigación se ha dado un uso inadecuado a los animales, que han muerto sin ninguna utilidad. Por lo que actualmente se debe valorar por un comité si el diseño y la estadística de la investigación es correcta. Además, también se están buscando técnicas que tratan de reducir al máximo posible el dolor que sienten los animales. El objetivo es que no exista estrés a nivel vital, psicológico o ambiental. Para ellos se usan anestésicos y tranquilizantes durante el desarrollo de las investigaciones.
El principal problema de esto es el uso en sí de animales, ya que les provocan problemas a nivel de salud y daño a nivel físico y psicológico, e incluso la muerte. A día de hoy es imposible descartar completamente el uso de animales, pero sí que se debe tratar de disminuir al máximo el uso de ellos, combinándolo con el uso de otros tejidos y endureciendo la legislación vigente para prohibir técnicas dolorosas o la repetición constante de experimentos ya probados. En cuanto a su ventaja principal es la gran similitud que tiene con el ser humano, por lo que se pueden realizar grandes avances. Pero se debe luchar para que estos animales no sufran y tengan un buen entorno en los laboratorios parecidos a los de su hábitat natural.
Si quieres seguir informándote sobre este tema, matricúlate ya en nuestro Curso AGAN0212 y desarrolla tu carrera profesional.
¡No dudes en contactar con nosotros!
¡Te estamos esperando!